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Real-Time PCR预混液(染料法)图片
产品货号:
WH0103
中文名称:
Real-Time PCR预混液(染料法)
英文名称:
2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus
产品规格:
125T|500T|5000T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

Real-Time PCR预混液(染料法)是采用SYBR Green I嵌合荧光法进行Real-Time PCR的专用试剂。产品中预先混有Real-Time PCR反应所需合适浓度的SYBR Green I,是一种2×浓度的PCR预混反应液,反应液配制十分简单方便。


本制品采用了独特的双组分热启动DNA聚合酶(化学修饰的HotStar Taq DNA聚合酶和抗体修饰的Taq DNA聚合酶),配合精心优化buffer体系,具有高扩增效率,高扩增特异性和宽广的可信范围的特点。




  • 2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus采用了独特的双组分热启动DNA聚合酶(化学修饰的HotStar Taq DNA聚合酶和抗体修饰的Taq DNA聚合酶),从而构成酶活自动调节系统,配合精心优化buffer体系,具有高扩增效率,高扩增特异性和宽广的可信范围的特点。
  • 本制品Buffer体系平衡了K+和NH4+的比例,还特别添加了独特的H-Bond因子,能协同调整反应体系中的氢键作用力,使引物模板退火条件更加严谨,反应的专一性增强,重复性更好。
  • 2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus中预混有SYBR Green I,PCR反应液配制时,只需加入模板、引物、灭菌蒸馏水便可进行Real-Time PCR反应,操作简单方便。
  • 本制品附带ROX Reference Dye,用于消除信号本底以及校正孔与孔之间产生的荧光信号误差,方便客户针对不同型号荧光定量PCR仪时选择对应浓度使用。



本制品采用了独特的双组分热启动DNA聚合酶进行PCR扩增,通过检测反应进程中SYBR Green I的荧光强度,达到检测PCR产物扩增量的目的。本制品中双热启动酶构成了独特的酶活自动调节系统。酶活自动调节系统是由化学修饰的HotStar Taq DNA聚合酶和抗体修饰的Taq DNA聚合酶组成。其中HotStar Taq DNA聚合酶占绝大部分比例,其聚合酶活性的激活是严格依赖于95℃高温的一个缓释过程,而抗体修饰Taq DNA聚合酶则在95℃高温下完全激活。经过95℃条件下孵育15min激活大部分HotStar Taq DNA聚合酶,进入PCR循环后,每经过一轮95℃条件下变性,即可重新激活一部分HotStar Taq DNA聚合酶。HotStar Taq DNA聚合酶独特的酶活缓释机制使其可以与抗体修饰的Taq DNA聚合酶构成独特的酶活自动调节系统。PCR反应初期,完全激活的抗体修饰的Taq DNA聚合酶可以协同已经激活的HotStar Taq DNA聚合酶达到优化酶活状态,而在整个PCR反应过程中,每一轮新释放的HotStart Taq DNA聚合酶活力刚好可以弥补因热变性所导致的部分酶活损失。因此,2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus在整个PCR反应过程始终保持优化的DNA聚合酶活力,配合精心优化Buffer体系,从而可以获得高扩增效率,高扩增特异性和更加广泛性的模板适应性。




组分125T500T5000T
2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus1.25mL4×1.25mL40×1.25mL
50×ROX Reference Dye250μL1mL10×1mL
RNase-Free ddH2O2×1mL5×1mL50×1mL

保存:-20℃,避光,有效期1年。


本制品于-30~-15℃可保存12个月。收到本制品后,请立即置于-30~-15℃避光保存。从-30~-15℃取出使用时,将冻存的2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus和50×ROX Reference Dye融解,然后轻轻颠倒混匀,待溶液完全均一后再行使用。如解冻后没有使用,须彻底混匀后重新冷冻(在解冻过程中盐会出现分层现象,未混匀进行冷冻,盐晶体的析出将会对酶造成损害)。如需一段时间内经常取用,可在2~8℃条件下储存3个月。避免反复多次冻融。




  • PCR反应的预变性条件必须设定为95℃ 15min,用以充分激活热启动酶。
  • 本制品中含有荧光染料SYBR Green I,保存本制品或配制PCR反应液时应避免强光照射。
  • 如果试剂没有混匀,其反应性能会有所下降。使用时请上下颠倒轻轻混匀,请不要使用振荡器进行混匀,尽量避免出现泡沫,并经瞬时离心后使用。
  • 引物纯度对反应特异性影响很大,建议使用PAGE级别以上纯化的引物。
  • 引物终浓度为0.3μM可以在大多数体系中获得良好的扩增结果。如果需要进一步优化,可以在0.2~0.5μM范围内调整引物浓度。
  • 20μL反应体系中,基因组DNA或cDNA模板的使用量一般小于100ng,逆转录产物作为模板时,使用量应不超过PCR体系终体积的20%。



  • 建立Real-Time PCR反应体系
    • 溶解2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus(如果保存在-30~-15℃),50×ROX Reference Dye,模板,引物和RNase-Free ddH2O,并将所有试剂在室温下平衡并彻底混匀。
    • 建议置于冰上进行Real-Time PCR反应液的配制。
      成分50μL体系25μL体系20μL体系终浓度
      2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus25μL12.5μL10μL
      正向引物(10μM)1.5μL0.75μL0.6μL0.3μM
      反向引物(10μM)1.5μL0.75μL0.6μL0.3μM
      cDNA模板-ng-pg
      50×ROX Reference Dye根据PCR仪选择添加或不添加
      RNase-free ddH2O至50μL至25μL至20μL-
      • 引物终浓度为0.3μM可以在大多数体系中获得良好的扩增结果。扩增效率不高时,可增加PCR反应体系中的引物浓度;发生非特异扩增时,可适当减少PCR反应体系中的引物浓度。需要进一步优化引物浓度的,可以在0.2~0.5μM范围内调整。
  • 进行Real-Time PCR反应
    • 建议采用两步法PCR反应程序进行反应,当出现模板浓度过低引起非特异性扩增,引物Tm值较低导致的扩增效率低下或扩增曲线重现性不佳等现象时,可尝试进行三步法扩增反应。
      • 两步法反应程序:
        阶段循环温度时间内容荧光信号采集
        预变性95℃15min预变性
        PCR反应40×95℃10sec变性
        60~66℃Δ120~32sec*退火/延伸
        熔解曲线分析
      • 三步法反应程序:
        阶段循环温度时间内容荧光信号采集
        预变性195℃15min预变性
        PCR反应4095℃10sec变性
        50~60℃Δ220sec退火
        72℃20~32sec*延伸
        熔解曲线分析
      Δ1:请先使用60℃ 32sec(20sec,30sec,31sec.)进行扩增。如果需要进一步优化,可以尝试在60~66℃范围内进行。
      Δ2:通常引物退火温度比引物的解链温度(Tm)低5℃,如果引物碱基数较少,可以适当提高退火温度,这样可以使PCR的特异性增加;如果碱基数较多,那么可以适当减低退火温度。
      *:使用不同型号仪器进行时间设定时,请按照仪器说明书要求进行实验操作,几种常见仪器的时间设定见下表:

      使用时Roche LightCycler/LightCycler 480请设定在20sec。
      使用ABI 7500 Fast/7900HT/7900HT Fast/ViiA 7/StepOne/StepOnePlus时请设定在30sec。
      使用ABI 7000和7300时请设定在31sec。
      使用ABI 7500时请设定在32sec。
    • 盖上反应管,轻柔混匀。可短暂离心,确保所有组分均在管底。
    • 将反应体系置于荧光定量PCR仪中,开始反应。



  • 以使用ABI 7500 Real Time PCR扩增仪为例,进行扩增效率优化时,可以按照下表中所示优化方案1或优化方案2的反应条件进行反应:
    基本反应程序优化方案1
    (增加两步法延伸时间进行优化)
    优化方案2
    (使用三步法进行PCR反应)
    循环温度时间时间温度时间
    95℃15min15min95℃15min
    40×95℃10sec10sec95℃10sec
    60℃32sec32~60sec55℃30sec
    NA72℃32sec
  • 以使用ABI 7500 Real Time PCR扩增仪为例,进行特异性优化的参考方案:
    基本反应程序
    (提高两步法退火温度)
    特异性优化方案
    循环温度时间温度时间
    95℃15min95℃15min
    40×95℃10sec95℃10sec
    60℃32sec60~64℃32sec



Real-Time PCR预混液(染料法)Real-Time PCR预混液(染料法)
图1.扩增曲线,以单链cDNA为模板,用2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus进行8对不同检测体系的qPCR实验,之后进行熔解曲线分析。结果显示,熔解曲线均为单一峰,未发现非特异性扩增和引物二聚体产生。图2.熔解曲线,cDNA的合成使用反转录试剂盒
Real-Time PCR预混液(染料法)
图3.熔解曲线分析,同一反应体系,使用2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus的熔解曲线仅有单一峰,为特异性扩增产物,其Tm值为83℃;使用国外A公司试剂除了特异性扩增产物外,还出现了引物二聚体。引物二聚体的Tm值一般在75℃左右。



进行RT-qPCR反应时的操作建议:

进行RT-qPCR反应时,有三种cDNA第一链合成试剂盒可以选择,分别是反转录试剂盒(WH0234),cDNA第一链合成反应预混液(货号:WH0235)和cDNA第一链合成试剂盒(货号:WH0099)。其中,反转录试剂盒(货号:WH0234)是专为两步法RT-qPCR第一步实验配制的,具有高灵敏度的RT-qPCR反应系统,可以从微量的总RNA或poly (A)+ RNA合成第一链cDNA。该试剂盒中使用的逆转录酶King Reverse Transcriptase与通常使用的Moloney鼠白血病病毒来源的M-MLV和鸟成髓细胞病毒来源的AMV不同,是一种使用大肠杆菌工程菌进行重组表达的全新高效逆转录酶。该酶能够高效反转录多种RNA模板,高效地将RNA反转录成cDNA第一链。


反转录试剂盒(货号:WH0234)为例,下列操作步骤适用于模板量为50ng~2μg的总RNA。
  • 将模板RNA在冰上解冻;5×gDNA Buffer、FQ-RT Primer Mix、10×King RT Buffer、RNase-Free ddH2O在室温(15~30℃)解冻,解冻后迅速置于冰上。使用前将每种溶液涡旋振荡混匀,简短离心以收集残留在管壁的液体。
    • 以下操作步骤请在冰上进行。为了保证反应液配制的准确性,进行各项反应时,应先配制成Mix,然后再分装到每个反应管中。
  • 按照表1的gDNA的去除体系配制混合液,彻底混匀。简短离心,并置于42℃,孵育3min。然后置于冰上放置。
  • 按照表2的反转录反应体系配制混合液。
  • 将反转录反应中的Mix加到gDNA去除步骤的反应液中,充分混匀。
  • 42℃,孵育15min;95℃,孵育3min之后放于冰上,得到的cDNA可用于后续实验,或低温保存。
  • 进行PCR反应:
    表1.gDNA去除反应体系
    成分用量
    5×gDNA Buffer2μL
    Total RNA-
    RNase-Free ddH2O至10μL
    表2.反转录反应体系
    成分用量
    10×King RT Buffer2μL
    Quicking RT Enzyme Mix1μL
    FQ-RT Primer Mix2μL
    RNase-Free ddH2O至10μL



进行Real Time PCR反应时,PCR引物的设计非常重要。设计PCR扩增效率高,反应特异性强的引物可以参考以下要求。
引物长度18~30个碱基
GC含量40~60%
Tm值引物软件都可以给出Tm,与引物长度、碱基组成、引物使用缓冲的离子强度有关。
上下游引物的Tm值要尽量接近。
简单的Tm计算公式:Tm=4℃(G+C)+2℃(A+T)。
一般采用较引物Tm值低5℃作为PCR退火温度。
提高退火温度可以增加PCR反应的特异性。
引物及PCR
扩增产物序列
PCR扩增产物适宜长度在80~200bp之间。
尽量避开在模板的二级结构区域设计引物。
避免上下游引物3'端之间形成2个或以上的互补碱基以减少引物二聚体的形成。
引物3'端碱基不能有多于3个连续的G或C。
引物自身不应存在互补序列,否则引物自身会折叠成发夹状结构。
避免引物3'末端碱基为T。
引物序列中A、T、G、C要尽量均匀分布。



  • 无扩增信号或扩增曲线起峰晚或仅有引物二聚体
    问题分析
    DNA模板中存在抑制剂重新纯化模板或降低模板使用量
    Mg2+浓度不合适使用2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus时,PCR反应体系中Mg2+的终浓度为2mM。
    对有些扩增体系,可以将Mg2+终浓度提高到5mM。
    进行Mg2+终浓度优化时,建议每次增加0.5mM Mg2+浓度进行实验。
    加样错误或试剂问题检查试剂浓度和保存条件,包括所使用的引物和模板。重复进行实验。
    热启动酶未能激活使用试剂时,请确保预变性条件为95℃ 15min,用以有效激活热启动DNA聚合酶。
    PCR条件、引物序列或浓度不当请确认引物未发生降解,引物浓度及PCR条件,扩增不好时,通常先尝试降低退火温度,
    延长退火时间和提高引物浓度,有时也可以提高退火温度,增加延伸时间,降低升温速度。
    对于GC含量高的模板,可以适当延长变性时间。
    如果还是扩增不好,请重新设计引物。
    起始模板问题检查起始模板的浓度,保存条件和质量。
    重新对模板进行线性梯度稀释,并用新稀释模板进行实验。
    增加起始模板使用量。
  • NTC出现较高的荧光值
    问题分析
    试剂污染建议使用新试剂进行实验。
    PCR反应液配制时发生污染采取必要的防污染策略(如使用带滤芯的枪头)。
    引物出现降解可以使用变性聚丙烯酰胺胶检测引物降解情况。
  • 出现引物二聚体和(或)非特异扩增
    问题分析
    Mg2+浓度不合适使用2×SuperReal SYBR PCR Mix Plus的反应体系含有Mg2+的终浓度为2mM。
    对有些扩增体系,可以将Mg2+终浓度增加到5mM。建议每次增加0.5mM Mg2+浓度进行优化。
    PCR退火温度太低建议每次增加2℃进行退火温度优化。
    引物设计不合适考虑重新设计引物序列。
    PCR产物太长荧光定量PCR产物长度适宜在100~150bp之间,而且不应该超过500bp。
    引物出现降解可以使用变性聚丙烯酰胺胶检测引物降解情况。
    计量误差反应体积太小会导致检测精度下降。请根据定量PCR仪推荐的反应体积重新实验。
  • 定量值重现性差
    问题分析
    仪器方面的故障因为仪器的不适用,在温度管理或检测时产生重现性差。请根据相应仪器的说明书进行点检。
    样品纯度不好不纯的样品会导致实验的重现性差。
    稀释的模板放置太久通过梯度稀释的模板最好现配现用。
    引物质量下降尽量避免新合成引物批次间的差异,可以使用原来质量好的引物做为对照。
    PCR反应条件、引物浓度、序列等不恰当扩增效率差的PCR较容易产生重现性差。通过变更引物的浓度或PCR反应条件来进行调整。扩增不好时,一般可降低退火温度或提高引物浓度,也可以延长延伸时间。如模板的GC含量较高,可延长变性时间。仍得不到改善时,建议重新设计引物。
    计量误差反应体积太小会导致检测精度下降。请根据定量PCR仪推荐的反应体积重新实验。

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